[صفحه اصلی ]   [Archive] [ English ]  
:: درباره نشريه :: آخرين شماره :: تمام شماره‌ها :: جستجو :: ثبت نام :: ارسال مقاله :: تماس با ما ::
بخش‌های اصلی
صفحه اول سایت مجله::
صفحه اول سایت دانشگاه::
اطلاعات مجله::
اعضای دفتر مجله::
نمایه‌های مجله::
آرشیو مقالات::
راهنمای نویسندگان::
راهنمای داوران::
ثبت نام و ارسال مقاله::
امکانات سایت مجله::
واحد علم سنجی دانشگاه::
مقالات مرتبط::
::
جستجو در پایگاه

جستجوی پیشرفته
..
دریافت اطلاعات پایگاه
نشانی پست الکترونیک خود را برای دریافت اطلاعات و اخبار پایگاه، در کادر زیر وارد کنید.
..
نظرسنجی
نظر شما در مورد مقالات مجله علمی دانشگاه علوم پزشکی کردستان چیست؟
ضعیف
متوسط
خوب
عالی
   
..
شاخص های استنادی مجله

Citation Indices from GS

AllSince 2020
Citations101225537
h-index3926
i10-index259135

 
..
کتابخانه مرکزی دانشگاه علوم پزشکی کردستان
AWT IMAGE
..
معاونت تحقیقات و فن آوری
AWT IMAGE
..
SCImago Journal & Country Rank
:: دوره ۲۹، شماره ۱ - ( مجله علمی دانشگاه علوم پزشکی کردستان ۱۴۰۳ ) ::
جلد ۲۹ شماره ۱ صفحات ۲۱-۹ برگشت به فهرست نسخه ها
مقایسه اثرات آپوپتوتیک و سایتوتوکسیک عصاره Astragalus hamosus با پاکلیتاکسل در مدل کشت دو بعدی و سه بعدی سلول‌های اندوتلیال ورید نافی انسان
مظفر محمودی۱ ، گل آرا نصیری۲
۱- گروه پزشکی مولکولی و بیوتکنولوژی پزشکی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی کردستان، سنندج، ایران ، mzffrmahmoodi@gmail.com
۲- گروه مهندسی بافت و علوم سلولی کاربردی، دانشکده علوم و فناوری‌های نوین پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی شیراز، شیراز، ایران
چکیده:   (۱۰۸۷ مشاهده)
زمینه و هدف: رگ‌زایی برای متاستاز و رشد تومورهای جامد لازم است؛ زیرا اکسیژن و مواد غذایی را برای تومور فراهم می‌کند. اثر ضد رگ‌زایی یکی از مهم‌ترین مکانیسم‌های دارویی در درمان سرطان است و بسیاری از داروهای دارای اثر ضد رگ‌زایی شناسایی شده‌اند. با در نظر گرفتن فعالیت ضد توموری با مکانیسم مشابهی که در گیاه دارویی ناخنک (Astragalus hamosus با نام اختصاری (A. hamosus) شناسایی شده است، اثرات سایتوتوکسیک و آپوپتوتیک این گیاه بر روی سلول‌های اندوتلیال ورید نافی انسان (HUVEC)  در یک مدل ژل فیبرین سه بعدی در مقایسه با مدل کشت دو بعدی در این مطالعه مورد بررسی قرار گرفته است.
مواد و روش‌ها: عصاره‌ی ناخنک جهت تست سمیت سلولی بر روی HUVEC با استفاده از آنالیز MTT مورد بررسی قرار گرفت. فلوسایتومتری برای بررسی آپوپتوز، چرخه سلولی و تکثیر سلولی استفاده شد. همچنین با استفاده از آزمایش ریل‌تایم، بیان ژن‌های مرتبط با آپوپتوز مانند کاسپازهای 3، 8 و 9 و همچنین Bcl-2 ارزیابی شد.
یافته‌ها: بقا و تکثیر سلول‌های HUVEC بعد از تیمار با غلظت IC50 عصاره‌ی ناخنک به طور قابل ملاحظه‌ای کاهش پیدا کرد. آنالیز فلوسایتومتری نشان داد که چرخه‌ی سلولی در HUVEC در فاز G0/G1 در مدل سه بعدی بیشتر از مدل دو بعدی متوقف شد. فعالیت ضد تکثیر سلولی عصاره، بیان Ki-67 را بخصوص در کشت سه‌بعدی کاهش داد. همچنین بعد از تیمار با عصاره‌ی ناخنک، سطوح آپوپتوز در مدل کشت سه‌بعدی در مقایسه با مدل کشت دو بعدی افزایش پیدا کرد که این امر توسط فلوسایتومتری و ریل‌تایم تائید شد.
نتیجه‌گیری: بر اساس نتایج، عصاره‌ی ناخنک می‌تواند با اعمال اثرات سایتوتوکسیک و آپوپتوتیک با جلوگیری از تکثیر سلول‌های عروقی جهت درمان تومور استفاده شود. همچنین، ژل فیبرین سه‌بعدی می‌تواند خصوصیات ضد تکثیر سلولی و ضد آپوپتوزی تومورها را بهتر از محیط کشت دو بعدی شبیه سازی کند.
 
واژه‌های کلیدی: ناخنک، رگ‌زایی، آپوپتوز، پاکلیتاکسل
متن کامل [PDF 513 kb]   (۳۴۸ دریافت)    
نوع مطالعه: پژوهشي اصیل | موضوع مقاله: عمومى
دریافت: 1402/6/31 | پذیرش: 1402/8/21 | انتشار: 1403/1/28
فهرست منابع
1. Abbastabar H, Hamidifard P, Roustazadeh A, Mousavi SH, Mohseni S, Sepandi M, et al. Relationships between breast cancer and common non-communicable disease risk factors: An ecological study. Asian Pacific Journal of Cancer Prevention. 2013;14(9):5123-5. [DOI:10.7314/APJCP.2013.14.9.5123]
2. Ginsburg O, Bray F, Coleman MP, Vanderpuye V, Eniu A, Kotha SR, et al. The global burden of women's cancers: a grand challenge in global health. The Lancet. 2017;389(10071):847-60. [DOI:10.1016/S0140-6736(16)31392-7] [PMID]
3. Montazeri A, Vahdaninia M, Harirchi I, Harirchi AM, Sajadian A, Khaleghi F, et al. Breast cancer in Iran: need for greater women awareness of warning signs and effective screening methods. Asia Pacific family medicine. 2008;7(1):1-7. [DOI:10.1186/1447-056X-7-6] [PMID]
4. Pollard JW. Trophic macrophages in development and disease. Nature reviews immunology. 2009;9(4):259-70. [DOI:10.1038/nri2528] []
5. Menbari MN, Rahimi K, Ahmadi A, Mohammadi‐Yeganeh S, Elyasi A, Darvishi N, et al. miR‐483‐3p suppresses the proliferation and progression of human triple negative breast cancer cells by targeting the HDAC8> oncogene. Journal of cellular physiology. 2020;235(3):2631-42. [DOI:10.1002/jcp.29167] [PMID]
6. Quail DF, Joyce JA. Microenvironmental regulation of tumor progression and metastasis. Nature medicine. 2013;19(11):1423-37. [DOI:10.1038/nm.3394] [PMID] []
7. Mahmoodi M, Ferdowsi S, Ebrahimi-Barough S, Kamian S, Ai J. Tissue engineering applications in breast cancer. Journal of Medical Engineering & Technology. 2020;44(4):162-8. [DOI:10.1080/03091902.2020.1757771] [PMID]
8. Wei C, Yang C, Wang S, Shi D, Zhang C, Lin X, et al. Crosstalk between cancer cells and tumor associated macrophages is required for mesenchymal circulating tumor cell-mediated colorectal cancer metastasis. Molecular cancer. 2019;18(1):1-23. [DOI:10.1186/s12943-019-0976-4] []
9. Pleşca‐Manea L, Pârvu AE, Pârvu M, Taaˇmaş M, Buia R, Puia M. et al. Effects of Melilotus officinalis on acute inflammation. Phytotherapy research. 2002;16(4):316-9. [DOI:10.1002/ptr.875] [PMID]
10. Braga PC, Dal Sasso M, Culici M, Spallino A, Falchi M, Bertelli A, et al. Antioxidant activity of Calendula officinalis extract: inhibitory effects on chemiluminescence of human neutrophil bursts and electron paramagnetic resonance spectroscopy. Pharmacology. 2009;83(6):348-55. [DOI:10.1159/000217583] [PMID]
11. Narimani R, Tarakemeh A, Moghaddam M, Mahmoodi Sourestani M. Phytochemical variation within aerial parts of ferula cupularis populations, an endangered medicinal plant from Iran. Chemistry & Biodiversity. 2021;18(12):e2100551. [DOI:10.1002/cbdv.202100551] [PMID]
12. Bocci G, Di Paolo A, Danesi R. The pharmacological bases of the antiangiogenic activity of paclitaxel. Angiogenesis. 2013;16:481-92. [DOI:10.1007/s10456-013-9334-0] [PMID] []
13. Greenwell M, Rahman P. Medicinal plants: their use in anticancer treatment. International journal of pharmaceutical sciences and research. 2015;6(10):4103.
14. Tian Q-E, Yan M, Cai H-L, Tan Q-Y, Zhang W-Y. Astragalus polysaccharides can regulate cytokine and P-glycoprotein expression in H22 tumor-bearing mice. World Journal of Gastroenterology: WJG. 2012;18(47):7079. [DOI:10.3748/wjg.v18.i47.7079] []
15. Ansari G, Delbari A, Karimi M, Akbari Kamrani AA, Abolfathi Momtaz Y, Sahaf R. et al. The effect of Melilotous Officinalis oil on the physical function of older adults with mild to moderate knee osteoarthritis: A double-blind randomized controlled trial. Iranian Journal of Ageing. 2019;14(2):132-43.
16. Qi H, Wei L, Han Y, Zhang Q, Lau AS-Y, Rong J. et al. Proteomic characterization of the cellular response to chemopreventive triterpenoid astragaloside IV in human hepatocellular carcinoma cell line HepG2. International journal of oncology. 2010;36(3):725-35. [DOI:10.3892/ijo_00000548] [PMID]
17. Huang C, Xu D, Xia Q, Wang P, Rong C, Su Y. et al. Reversal of P-glycoprotein-mediated multidrug resistance of human hepatic cancer cells by Astragaloside II. Journal of Pharmacy and Pharmacology. 2012;64(12):1741-50. [DOI:10.1111/j.2042-7158.2012.01549.x] [PMID]
18. Zhang D, Zhuang Y, Pan J, Wang H, Li H, Yu Y, et al. Investigation of effects and mechanisms of total flavonoids of Astragalus and calycosin on human erythroleukemia cells. Oxidative medicine and cellular longevity. 2012;2012:1-5. https://doi.org/10.1155/2012/781516 [DOI:10.1155/2012/209843] [PMID] []
19. Umer KH, Zeenat F, Ahmad W, Vakil A. Therapeutics, phytochemistry and pharmacology of Iklilul Malik (Astragalus hamosus Linn): A natural Unani Remedy. International Journal of Herbal Medicine .2017; 5(5): 01-05
20. Krasteva I, Momekov G, Zdraveva P, Konstantinov S, Nikolov S. Antiproliferative effects of a flavonoid and saponins from Astragalus hamosus against human tumor cell lines. Pharmacognosy Magazine. 2008;4(16):269-72.
21. Saleem S, Shaharyar MA, Khusroo MJ, Ahmad P, Rahman RU, Ahmad K, et al. Anticancer potential of rhamnocitrin 4′-β-d-galactopyranoside against N-diethylnitrosamine-induced hepatocellular carcinoma in rats. Molecular and cellular biochemistry. 2013;384:147-53. [DOI:10.1007/s11010-013-1792-6] [PMID]
22. McCulloch M, See C, Shu X-j, Broffman M, Kramer A, Fan W-y, et al. Astragalus-based Chinese herbs and platinum-based chemotherapy for advanced non-small-cell lung cancer: meta-analysis of randomized trials. Journal of Clinical Oncology. 2006;24(3):419-30. [DOI:10.1200/JCO.2005.03.6392]
23. Song M, Yin Y, Zhang J, Zhang B, Bian Z, Quan C, et al. MiR-139-5p inhibits migration and invasion of colorectal cancer by downregulating AMFR and NOTCH1. Protein & cell. 2014;5(11):851-61. [DOI:10.1007/s13238-014-0093-5] [PMID] []
24. Chen W, Yuan Y, Li C, Mao H, Liu B, Jiang X. et al. Modulating tumor extracellular matrix by simultaneous inhibition of two cancer cell receptors. Advanced Materials. 2022;34(10):2109376. [DOI:10.1002/adma.202109376] [PMID]
25. MOSESSON MW. Fibrinogen and fibrin structure and functions. Journal of thrombosis and haemostasis. 2005;3(8):1894-904. [DOI:10.1111/j.1538-7836.2005.01365.x] [PMID]
26. Mahmoodi M, Ebrahimi-Barough S, Kamian S, Azami M, Mehri M, Abdi M, et al. Fabrication and characterization of a three-dimensional fibrin gel model to evaluate anti-proliferative effects of Astragalus hamosus plant extract on breast cancer cells. Asian Pacific journal of cancer prevention: APJCP. 2022;23(2):731. [DOI:10.31557/APJCP.2022.23.2.731] [PMID] []
27. Csupor‐Löffler B, Hajdú Z, Zupkó I, Réthy B, Falkay G, Forgo P, et al. Antiproliferative effect of flavonoids and sesquiterpenoids from Achillea millefolium sl on cultured human tumour cell lines. Phytotherapy Research: An International Journal Devoted to Pharmacological and Toxicological Evaluation of Natural Product Derivatives. 2009;23(5):672-6. [DOI:10.1002/ptr.2697] [PMID]
28. Zuo K, Zhang X, Zou J, Li D, Lv Z. Establishment of a paclitaxel resistant human breast cancer cell strain (MCF-7/Taxol) and intracellular paclitaxel binding protein analysis. Journal of International Medical Research. 2010;38(4):1428-35. [DOI:10.1177/147323001003800424]
29. Duval K, Grover H, Han L-H, Mou Y, Pegoraro AF, Fredberg J, et al. Modeling physiological events in 2D vs. 3D cell culture. Physiology. 2017;32(4):266-77. [DOI:10.1152/physiol.00036.2016]
30. Seo J, Do Yoo J, Kim M, Shim G, Oh Y-K, Park R-W, et al. Fibrinolytic nanocages dissolve clots in the tumor microenvironment, improving the distribution and therapeutic efficacy of anticancer drugs. Experimental & Molecular Medicine. 2021;53(10):1592-601. [DOI:10.1038/s12276-021-00688-7] [PMID]
31. Kniebs C, Luengen AE, Guenther D, Cornelissen CG, Schmitz-Rode T, Jockenhoevel S, et al. Establishment of a pre-vascularized 3D lung cancer model in fibrin gel-influence of hypoxia and cancer-specific therapeutics. Frontiers in bioengineering and biotechnology. 2021;9:1-11. [DOI:10.3389/fbioe.2021.761846] [PMID] []
32. Campisi M, Shin Y, Osaki T, Hajal C, Chiono V, Kamm RD. 3D self-organized microvascular model of the human blood-brain barrier with endothelial cells, pericytes and astrocytes. Biomaterials. 2018;180:117-29. [DOI:10.1016/j.biomaterials.2018.07.014] [PMID] []
33. Pourmorad F, Hosseinimehr S, Shahabimajd N. Antioxidant activity, phenol and flavonoid contents of some selected Iranian medicinal plants. African journal of biotechnology. 2006;5(11): 1142-1145.
34. Shojaii A, Motaghinejad M, Norouzi S, Motevalian M. Evaluation of anti-inflammatory and analgesic activity of the extract and fractions of Astragalus hamosus in animal models. Iranian journal of pharmaceutical research: IJPR. 2015;14(1):263.
35. Yance Jr DR, Sagar SM. Targeting angiogenesis with integrative cancer therapies. Integrative cancer therapies. 2006;5(1):9-29. [DOI:10.1177/1534735405285562] [PMID]
36. Hoseinkhani Z, Norooznezhad F, Rastegari-Pouyani M, Mansouri K. Medicinal plants extracts with antiangiogenic activity: where is the link? Advanced Pharmaceutical Bulletin. 2020;10(3):370. [DOI:10.34172/apb.2020.045] [PMID] []
37. Subbaraj GK, Kumar YS, Kulanthaivel L. Antiangiogenic role of natural flavonoids and their molecular mechanism: an update. The Egyptian Journal of Internal Medicine. 2021;33(1):1-10. [DOI:10.1186/s43162-021-00056-x]
38. Gacche R. Compensatory angiogenesis and tumor refractoriness. Oncogenesis. 2015;4(6):1-8. [DOI:10.1038/oncsis.2015.14] [PMID] []
39. Li X, Qu L, Dong Y, Han L, Liu E, Fang S, et al. A review of recent research progress on the astragalus genus. Molecules. 2014;19(11):18850-80. [DOI:10.3390/molecules191118850] [PMID] []
40. Khater M, Greco F, Osborn HM. Antiangiogenic activity of flavonoids: a systematic review and meta-analysis. Molecules. 2020;25(20):4712. [DOI:10.3390/molecules25204712] [PMID] []
ارسال پیام به نویسنده مسئول

ارسال نظر درباره این مقاله
نام کاربری یا پست الکترونیک شما:

CAPTCHA



XML   English Abstract   Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

mahmoodi M, nasiri G. Comparison of the apoptotic and cytotoxic effects of Astragalus hamosus in the two- and three-dimensional cultures of human umbilical vein endothelial cells. SJKU 2024; 29 (1) :9-21
URL: http://sjku.muk.ac.ir/article-1-8115-fa.html

محمودی مظفر، نصیری گل آرا. مقایسه اثرات آپوپتوتیک و سایتوتوکسیک عصاره Astragalus hamosus با پاکلیتاکسل در مدل کشت دو بعدی و سه بعدی سلول‌های اندوتلیال ورید نافی انسان. مجله علمي دانشگاه علوم پزشكي كردستان. ۱۴۰۳; ۲۹ (۱) :۹-۲۱

URL: http://sjku.muk.ac.ir/article-۱-۸۱۱۵-fa.html



بازنشر اطلاعات
Creative Commons License این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است.
دوره 29، شماره 1 - ( مجله علمی دانشگاه علوم پزشکی کردستان 1403 ) برگشت به فهرست نسخه ها
مجله علمی دانشگاه علوم پزشکی کردستان Scientific Journal of Kurdistan University of Medical Sciences
مجله علمی دانشگاه علوم پزشکی کردستان Scientific Journal of Kurdistan University of Medical Sciences
Persian site map - English site map - Created in 0.07 seconds with 46 queries by YEKTAWEB 4710