[صفحه اصلی ]   [Archive] [ English ]  
:: درباره نشريه :: آخرين شماره :: تمام شماره‌ها :: جستجو :: ثبت نام :: ارسال مقاله :: تماس با ما ::
بخش‌های اصلی
صفحه اول سایت مجله::
صفحه اول سایت دانشگاه::
اطلاعات مجله::
اعضای دفتر مجله::
نمایه‌های مجله::
آرشیو مقالات::
راهنمای نویسندگان::
راهنمای داوران::
ثبت نام و ارسال مقاله::
امکانات سایت مجله::
واحد علم سنجی دانشگاه::
مقالات مرتبط::
::
جستجو در پایگاه

جستجوی پیشرفته
..
دریافت اطلاعات پایگاه
نشانی پست الکترونیک خود را برای دریافت اطلاعات و اخبار پایگاه، در کادر زیر وارد کنید.
..
نظرسنجی
نظر شما در مورد مقالات مجله علمی دانشگاه علوم پزشکی کردستان چیست؟
ضعیف
متوسط
خوب
عالی
   
..
شاخص های استنادی مجله

Citation Indices from GS

AllSince 2020
Citations98325282
h-index3825
i10-index254128

 
..
کتابخانه مرکزی دانشگاه علوم پزشکی کردستان
AWT IMAGE
..
معاونت تحقیقات و فن آوری
AWT IMAGE
..
SCImago Journal & Country Rank
:: دوره 29، شماره 5 - ( مجله علمی دانشگاه علوم پزشکی کردستان 1403 ) ::
جلد 29 شماره 5 صفحات 24-11 برگشت به فهرست نسخه ها
تأثیر مصرف کاسنی بر شاخص‌های فشار اکسایشی بافت کلیه در موش‌های صحرایی ماده ویستار مصرف کننده تستوسترون انانتات طی 8 هفته تمرین مقاومتی
خدیجه ملایی1 ، ساناز میرزایان شانجانی 2، علی گُرزی3 ، یاسر کاظم زاده4 ، عبدالعلی بنائی فر5
1- گروه فیزیولوژی ورزشی/ واحد اسلامشهر، دانشگاه آزاد اسلامی، اسلامشهر، ایران.
2- گروه فیزیولوژی ورزشی/ واحد اسلامشهر، دانشگاه آزاد اسلامی، اسلامشهر، ایران. ، Sanaz.Mirzayan@iau.ac.ir
3- گروه علوم ورزشی/ دانشگاه زنجان، زنجان، ایران.
4- دانش آموخته دانشگاه خوارزمی، تهران، ایران.
5- گروه فیزیولوژی ورزشی/ واحد تهران جنوب، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران.
چکیده:   (565 مشاهده)
زمینه و هدف: تستوسترون انانتات یکی از داروهای رایج در بین زنان ورزشکار است و یکی از عوارض اساسی آن افزایش فشار اکسایشی است. کاسنی به دلیل اثرات آنتی اکسیدانی و محافظتی آن مورد توجه است. بنابراین، هدف از این مطالعه بررسی اثر عصاره کاسنی بر SOD، GPX و MDA در بافت کلیه موش‌های صحرایی ماده ویستار طی هشت هفته تمرین مقاومتی بود.
مواد و روش­ها: 22 سر موش صحرایی ماده ویستار با سن 8 هفته و وزن 14/17±208/22گرم از انستیتو پاستور (ایران) تهیه شد. پس از یک هفته آشنایی، موش ها به طور تصادفی به 3 گروه 1) گروه تمرین + دارونما (n=6)، 2) تمرین + تستوسترون انانتات (n=8)، 3) تمرین + تستوسترون انانتات + کاسنی (n=8) تقسیم شدند. موش‌ها هشت هفته تمرین مقاومتی با نردبان 26 پله‌ای با وزنه (پنج روز در هفته) انجام دادند. موش های گروه تستوسترون سه بار در هفته استروئید (تستوسترون انانتات/دوز 20 میلی گرم) (به صورت تزریقی) و مکمل کاسنی (6 گرم به ازای هر کیلوگرم وزن بدن) (به صورت گاواژ) دریافت کردند. سطوح سوپراکسید دیسموتاز (SOD)، گلوتاتیون پراکسیداز (GPX) و مالون دی آلدئید (MDA) توسط روش اسپکتروفتومتری ارزیابی شد و آزمون تحلیل واریانس یک راهه برای مقایسه تفاوت‌های بین گروهی همراه با آزمون تعقیبی بونفرونی برای مقایسه زوجی انجام شد.
یافته‌ها: مصرف تستوسترون باعث کاهش معنادار سطح شاخصهای GPX و SOD موش­ها(0/0001>P)  و افزایش معنادار سطح شاخص MDA (0/0001>P) در سطح نسبت به گروه دارونما گردید و مصرف کاسنی باعث افزایش معنادار سطح شاخص های GPX و SOD موش­ها و کاهش معنادار سطح شاخص MDA آنها نسبت به موش­های دارونما بافت کلیه شد.
نتیجه‌گیری: نتایج نشان میدهد مصرف تستوسترون باعث کاهش فعالیت آنزیم‌های آنتی‌اکسیدانی و افزایش فشار اکسایشی در بدن موش‌های تمرین کرده مقاومتی شده است. مصرف کاسنی همراه با مکمل تستوسترون موجب بازگشت سطح این شاخص های فشار اکسایشی به حدود سطح آ­نها در موش­های دارونما گردید.


 
واژه‌های کلیدی: کاسنی، فشار اکسایشی، بافت کلیه، تستوسترون انانتات
متن کامل [PDF 600 kb]   (123 دریافت)    
نوع مطالعه: پژوهشي اصیل | موضوع مقاله: تربیت بدنی
دریافت: 1402/8/17 | پذیرش: 1403/2/24 | انتشار: 1403/10/9
فهرست منابع
1. 1.Reardon CL, Creado S. Drug abuse in athletes. Subst Abuse Rehabil. 2014 Aug 14;5:95-105. [DOI:10.2147/SAR.S53784] [PMID] []
2. Hartgens F, Kuipers H. Effects of androgenic-anabolic steroids in athletes. Sports Med. 2004;34(8):513-54. [DOI:10.2165/00007256-200434080-00003] [PMID]
3. Albano GD, Amico F, Cocimano G, Liberto A, Maglietta F, Esposito M, Rosi GL, Di Nunno N, Salerno M, Montana A. Adverse Effects of Anabolic-Androgenic Steroids: Lit. Rev. 2021 Jan 19;9(1):97. [DOI:10.3390/healthcare9010097] [PMID] []
4. Schieber M, Chandel NS. ROS function in redox signaling and oxidative stress. Curr Biol. 2014 May 19;24(10):R453-62 [DOI:10.1016/j.cub.2014.03.034] [PMID] []
5. Pizzino G, Irrera N, Cucinotta M, Pallio G, Mannino F, Arcoraci V, Squadrito F, Altavilla D, Bitto A. Oxidative Stress: Harms and Benefits for Human Health. Oxid Med Cell Longev. 2017;2017:8416763. [DOI:10.1155/2017/8416763] [PMID] []
6. Kurutas EB. The importance of antioxidants which play the role in cellular response against oxidative/nitrosative stress: current state. Nutr J. 2016 Jul 25;15(1):71. [DOI:10.1186/s12937-016-0186-5] [PMID] []
7. Sadowska-Krępa E, Kłapcińska B, Jagsz S, Nowara A, Szołtysek-Bołdys I, Chalimoniuk M, Langfort J, Chrapusta SJ. High-dose testosterone enanthate supplementation boosts oxidative stress, but exerts little effect on the antioxidant barrier in sedentary adolescent male rat liver. Pharmacol Rep. 2017 Aug;69(4):673-678 [DOI:10.1016/j.pharep.2017.02.023] [PMID]
8. Liu W, Akbarpour-Beni M, Movahed S, Gorzi A, Cheraghi E, Amini H. Neutralising the testosterone enanthate-induced oxidative stress in rats uterine tissue by propolis and chicory as natural antioxidants. Comp Exerc Physiol. 2023;19(1):87-93. [DOI:10.3920/CEP220010]
9. Asmat U, Abad K, Ismail K. Diabetes mellitus and oxidative stress-A concise review. Saudi Pharm J. 2016 Sep;24(5):547-553. [DOI:10.1016/j.jsps.2015.03.013] [PMID] []
10. Memudu AE, Dongo GA. A study to demonstrate the potential of Anabolic Androgen Steroid to activate oxidative tissue damage, nephrotoxicity and decline endogenous antioxidant system in renal tissue of Adult Wistar Rats. Toxicol Rep. 2023;10:320-326. [DOI:10.1016/j.toxrep.2023.02.010] [PMID] []
11. Street RA, Sidana J, Prinsloo G. Cichorium intybus: Traditional Uses, Phytochemistry, Pharmacology, and Toxicology. Evid Based Complement Alternat Med. 2013;2013:579319. [DOI:10.1155/2013/579319] [PMID] []
12. Janda K, Gutowska I, Geszke-Moritz M, Jakubczyk K. The Common Cichory (Cichorium intybus L.) as a Source of Extracts with Health-Promoting Properties-A Review. Molecules. 2021 Mar 23;26(6):1814. [DOI:10.3390/molecules26061814] [PMID] []
13. Li S, Tan HY, Wang N, Zhang ZJ, Lao L, Wong CW, Feng Y. The Role of Oxidative Stress and Antioxidants in Liver Diseases. Int J Mol Sci. 2015 Nov 2;16(11):26087-124. [DOI:10.3390/ijms161125942] [PMID] []
14. Moloudi MR, Hassanzadeh K, Rouhani S, Zandi F, Ahmadi A, Khalwatian P, et al. Effect of chloroformic extract of Cichorium intybus on liver function tests and serum level of TNF-α in obstructive cholestasis in rat. SJKU 2014; 19 (4):10-19.
15. Nouri H, Sheikholeslami-Vatani D, Moloudi MR. Changes in UPR-PERK pathway and muscle hypertrophy following resistance training and creatine supplementation in rats. J Physiol Biochem. 2021 May;77(2):331-339. [DOI:10.1007/s13105-021-00801-4] [PMID]
16. Gorzi A, Rajabi H, Gharakhanlou R, Dehkhoda M, Hedayati M. The effects of 8 weeks of resistance training on total and A12 acetyl cholinesterase activity in slow twitch muscles of rats. RSMT 2017; 15 (13):9-16. URL: http://jsmt.khu.ac.ir/article-1-209-en.html
17. Hassanzadeh A, Shahvaisi K, Hassanzadeh K, Izadpanah E, Amini A, Moloudi MR. Effects of rebamipide and encapsulating rebamipide with chitosan capsule on inflammatory mediators in rat experimental colitis. SJKU 2015; 20 (3):94-104.
18. Chodari L, Smailnejad S, Fallahi M, Khalaji N, Ghorbanzadeh V. OXIDATIVE STRESS IS MARKEDLY REDUCED BY COMBINED VOLUNTARY EXERCISE AND TESTOSTERONE IN THE HEART OF DIABETIC RATS. Acta Endocrinol (Buchar). 2019 Apr-Jun;15(2):173-181. [DOI:10.4183/aeb.2019.173] [PMID] []
19. Rizvi W, Fayazuddin M, Shariq S, Singh O, Moin S, Akhtar K, Kumar A. Anti-inflammatory activity of roots of Cichorium intybus due to its inhibitory effect on various cytokines and antioxidant activity. Anc Sci Life. 2014 Jul-Sep;34(1):44-49. [DOI:10.4103/0257-7941.150780] [PMID] []
20. Ighodaro OM, Akinloye OA. First line defence antioxidants-superoxide dismutase (SOD), catalase (CAT) and glutathione peroxidase (GPX): Their fundamental role in the entire antioxidant defence grid. Alexandria Journal of Medicine. 2018;54(4):287-293. [DOI:10.1016/j.ajme.2017.09.001]
21. Asadi N, Bahmani M, Kheradmand A, Rafieian-Kopaei M. The Impact of Oxidative Stress on Testicular Function and the Role of Antioxidants in Improving it: A Review. J Clin Diagn Res. 2017 May;11(5):IE01-IE05. [DOI:10.7860/JCDR/2017/23927.9886] [PMID] []
22. Davey RA, Grossmann M. Androgen Receptor Structure, Function and Biology: From Bench to Bedside. Clin Biochem Rev. 2016 Feb;37(1):3-15.
23. Eyster KM, Mark CJ, Gayle R, Martin DS. The effects of estrogen and testosterone on gene expression in the rat mesenteric arteries. Vascul Pharmacol. 2007 Oct;47(4):238-47. [DOI:10.1016/j.vph.2007.06.007] [PMID] []
24. Cruz-Topete D, Dominic P, Stokes KY. Uncovering sex-specific mechanisms of action of testosterone and redox balance. Redox Biol. 2020 Apr;31:101490. [DOI:10.1016/j.redox.2020.101490] [PMID] []
25. Tostes RC, Carneiro FS, Carvalho MH, Reckelhoff JF. Reactive oxygen species: players in the cardiovascular effects of testosterone. Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol. 2016 Jan 1;310(1):R1-14. [DOI:10.1152/ajpregu.00392.2014] [PMID] []
26. Aydilek N, Aksakal M, Karakilcik AZ. Effects of testosterone and vitamin e on the antioxidant system in rabbit testis. Andrologia. 2004 Oct;36(5):277-281. [DOI:10.1111/j.1439-0272.2004.00618.x] [PMID]
27. Alahmar AT. Role of Oxidative Stress in Male Infertility: An Updated Review. J Hum Reprod Sci. 2019 Jan-Mar;12(1):4-18. [DOI:10.4103/jhrs.JHRS_150_18] [PMID] []
28. Darbandi M, Darbandi S, Agarwal A, Sengupta P, Durairajanayagam D, Henkel R, Sadeghi MR. Reactive oxygen species and male reproductive hormones. Reprod Biol Endocrinol. 2018 Sep 11;16(1):87. [DOI:10.1186/s12958-018-0406-2] [PMID] []
29. Tarafdar A, Pula G. The Role of NADPH Oxidases and Oxidative Stress in Neurodegenerative Disorders. Int J Mol Sci. 2018 Nov 30;19(12):3824. [DOI:10.3390/ijms19123824] [PMID] []
30. Zorov DB, Juhaszova M, Sollott SJ. Mitochondrial reactive oxygen species (ROS) and ROS-induced ROS release. Physiol Rev. 2014 Jul;94(3):909-50. [DOI:10.1152/physrev.00026.2013] [PMID] []
31. Su LJ, Zhang JH, Gomez H, Murugan R, Hong X, Xu D, Jiang F, Peng ZY. Reactive Oxygen Species-Induced Lipid Peroxidation in Apoptosis, Autophagy, and Ferroptosis. Oxid Med Cell Longev. 2019 Oct 13;2019:5080843. [DOI:10.1155/2019/5080843] [PMID] []
32. Thirupathi A, Wang M, Lin JK, Fekete G, István B, Baker JS, Gu Y. Effect of Different Exercise Modalities on Oxidative Stress: A Systematic Review. Biomed Res Int. 2021 Feb 11;2021:1947928. [DOI:10.1155/2021/1947928] [PMID] []
33. Bloomer RJ, Fry AC, Falvo MJ, Moore CA. Protein carbonyls are acutely elevated following single set anaerobic exercise in resistance trained men. J Sci Med Sport. 2007 Dec;10(6):411-417. [DOI:10.1016/j.jsams.2006.07.014] [PMID]
34. Parker L, McGuckin TA, Leicht AS. Influence of exercise intensity on systemic oxidative stress and antioxidant capacity. Clin Physiol Funct Imaging. 2014 Sep;34(5):377-383. [DOI:10.1111/cpf.12108] [PMID]
35. Emamiyan M, Vaezi G, Tehranipour M, et al. Preventive effects of the aqueous extract of Cichorium intybus L. flower on ethylene glycol-induced renal calculi in rats. Avicenna J Phytomed. 2017;8.
36. El-Sayed YS, Lebda MA, Hassinin M, Neoman SA. Chicory (Cichorium intybus L.) root extract regulates the oxidative status and antioxidant gene transcripts in CCl4-induced hepatotoxicity. PLoS One. 2015 Mar 25;10(3):e0121549. [DOI:10.1371/journal.pone.0121549] [PMID] []
37. Zahid A, Saggu S, Sakran M, Zidan N, Rehman H, Ansari A. Phytochemical, antioxidant and mineral composition of Hydroalcoholic extract of Chicory (Cichorium intybus L.) leaves. Saudi J Biol Sci. 2014 Nov;21(6):605-610
ارسال پیام به نویسنده مسئول

ارسال نظر درباره این مقاله
نام کاربری یا پست الکترونیک شما:

CAPTCHA

Ethics code: IR.IAU.TMU.REC.1399.347
Clinical trials code:



XML   English Abstract   Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Molaei K, Mirzayan Shanjani S, Gorzi A, Kazemzadeh Y, Banaeifar A. The Effect of Chicory Consumption on Oxidative Stress Indices of the Kidney Tissue in Female Wistar Rats Consuming Testosterone Enanthate during eight weeks Resistance Training. SJKU 2024; 29 (5) :11-24
URL: http://sjku.muk.ac.ir/article-1-8188-fa.html

ملایی خدیجه، میرزایان شانجانی ساناز، گُرزی علی، کاظم زاده یاسر، بنائی فر عبدالعلی. تأثیر مصرف کاسنی بر شاخص‌های فشار اکسایشی بافت کلیه در موش‌های صحرایی ماده ویستار مصرف کننده تستوسترون انانتات طی 8 هفته تمرین مقاومتی. مجله علمي دانشگاه علوم پزشكي كردستان. 1403; 29 (5) :11-24

URL: http://sjku.muk.ac.ir/article-1-8188-fa.html



بازنشر اطلاعات
Creative Commons License این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است.
دوره 29، شماره 5 - ( مجله علمی دانشگاه علوم پزشکی کردستان 1403 ) برگشت به فهرست نسخه ها
مجله علمی دانشگاه علوم پزشکی کردستان Scientific Journal of Kurdistan University of Medical Sciences
مجله علمی دانشگاه علوم پزشکی کردستان Scientific Journal of Kurdistan University of Medical Sciences
Persian site map - English site map - Created in 0.07 seconds with 46 queries by YEKTAWEB 4679